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如何避免掉進(jìn)做免疫組化時(shí)導(dǎo)致非特異性染色的八大坑?
發(fā)布時(shí)間: 2021-09-08 點(diǎn)擊次數(shù): 1260次全國(guó)江山一片紅,這可不是閱兵日的朋友圈,而是在做免疫組化?。『煤玫囊粡埰尤镜门K臟的。一下子整個(gè)人都不好了。這里,總結(jié)出了導(dǎo)致非特異性染色的八個(gè)大坑,以及避免掉坑里的一些做法。皆是獨(dú)門絕技,不要眨眼咯!
1、抗體問題,真的是一分錢一分貨
一抗用多克隆抗體容易出現(xiàn)非特異性染色,建議用高純度,高效價(jià)的針對(duì)更具特異性抗原決定簇的單克隆抗體來解決。單克隆抗體很貴,不過結(jié)果真的很好。尤其是背景非特異性染色不會(huì)太深。真是一分價(jià)錢一分貨。一抗過期也會(huì)造成杯具,所以要注意抗體的有效期。
2、抗體濃度過高/孵育時(shí)間過長(zhǎng)
一抗?jié)舛忍咭彩浅霈F(xiàn)非特異性染色的常見原因。解決的辦法就是預(yù)實(shí)驗(yàn)。每次使用新抗體前應(yīng)該多做預(yù)實(shí)驗(yàn),摸索出較為理想的工作濃度,不能簡(jiǎn)單地按照說明書來用。另一個(gè)常見原因就是孵育時(shí)間過長(zhǎng)。解決的辦法就是定時(shí)器。加上抗體后,立刻調(diào)好定時(shí)器,提醒自己及時(shí)終止反應(yīng),就會(huì)避免這個(gè)問題。
3、DAB 染色時(shí)間太長(zhǎng)/變質(zhì)
DAB 的孵育時(shí)間過長(zhǎng),會(huì)造成背景非特異性染色。DAB 的顯色時(shí)間不是一成不變的,主要靠自己在顯微鏡下盯著,一旦出現(xiàn)淺淺的棕色的時(shí)候,就要馬上沖洗。出現(xiàn)棕色的時(shí)間過短,表明抗體濃度過高;出現(xiàn)棕色的時(shí)間過長(zhǎng),表明抗體濃度過低。DAB 要保存于避光干燥的地方,現(xiàn)用現(xiàn)配,臨用前才加入 H2O2。圖 1 就沖洗的有些晚了;圖 2 就是剛剛好,染色效果棒棒噠!
4、內(nèi)源性酶和生物素
內(nèi)源性酶和生物素也會(huì)造成非特異性染色,特別是一些內(nèi)源性酶生物素含量豐富的組織,如肝臟,腎臟,脾臟等。處理的辦法為:滅活堿性磷酸酶:較為常用的方法是將左旋咪唑(24 mg/mL) 加入底物液中,并保持 PH 值在 7.6-8.2,即能除去大部分內(nèi)源性堿性磷酸酶;對(duì)于酸性磷酸酶,可以用 50 mmol/L 的酒石酸抑制;對(duì)于內(nèi)源性過氧化物酶,可以用 0.9%的雙氧水來滅活。對(duì)于內(nèi)源性生物素,染色前將切片浸于 25 μg/mL 親和素溶液中 15 分鐘,PBS 清洗 15 分鐘后即可染色。也可以 24 mg/mL 的卵白素封片 15 分鐘。
5、組織變干
一下子染太多片子的時(shí)候,容易出現(xiàn)這種情況。解決的辦法就是不要貪多嚼不爛。一次少染幾張。還有就是試劑充分覆蓋組織,超出組織邊緣 2 mm。然后用 PAP 筆在組織周圍畫一個(gè)圈圈,把修復(fù)液圈在里面。避免修復(fù)液流走。圈圈應(yīng)該距離組織邊緣 3-4 mm。
6、浸泡時(shí)間過長(zhǎng)
切片在緩沖液或修復(fù)液里面浸泡過夜,也會(huì)引起杯具。這都是偷懶的做法。但是有時(shí)候也是可以偷一下懶的。獨(dú)門秘技就是 4°C 冰箱。只要把容器放在 4°C 冰箱里,過夜*沒有問題。
7、清洗不充分
清洗一定要充分。PBS 液一定要雙蒸水新配,用之前再次測(cè) PH 值。緩沖液用 0.05 mol/L 的 Tris-HCL,0.15 mol/L 的 NaCl 即可。如果加一點(diǎn)去垢劑 Tween-20 就更好了。
8、封閉血清問題
是否選擇了正確的封閉血清。原則是選擇二抗動(dòng)物的非免疫血清,例如二抗是羊抗兔,就要選擇非免疫羊血清。用 PBS 稀釋為 3-10%的溶液孵育切片,37°C 10-30 分鐘。這里不用洗,直接甩掉即可。再貢獻(xiàn)一個(gè)獨(dú)門絕招,直接用奶粉也可以。用 5%的脫脂奶粉就可以了。而且效果還不錯(cuò)。怎么樣?簡(jiǎn)單吧。
免疫組織化學(xué)是個(gè)苦活臟活。步驟多,時(shí)間長(zhǎng),還要接觸有毒有害的物質(zhì)。要是好好的一張 片子染出來都是全國(guó)江山一片紅,那才叫虧大發(fā)了。以上,介紹了一些心得體會(huì),希望對(duì)大家有所幫助。
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