細胞轉(zhuǎn)染的種類主要是瞬時轉(zhuǎn)染和穩(wěn)定轉(zhuǎn)染，目的和區(qū)別如下所示：

隨著基因與蛋白功能研究的深入，轉(zhuǎn)染目前已成為實驗室工作中經(jīng)常涉及的基本方法。轉(zhuǎn)染大致可分為物理介導(dǎo)、化學介導(dǎo)和生物介導(dǎo)三類途徑。電穿孔法、顯微注射和基因槍屬于通過物理方法將基因?qū)爰毎姆独?；化學介導(dǎo)方法很多，如經(jīng)典的磷酸鈣共沉淀法、脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染方法和多種陽離子物質(zhì)介導(dǎo)的技術(shù)；生物介導(dǎo)方法，有較為原始的原生質(zhì)體轉(zhuǎn)染和現(xiàn)在比較多見的各種病毒介導(dǎo)的轉(zhuǎn)染技術(shù)。如下圖所示：

下面分別介紹下原理和應(yīng)用特點：

原理：帶正電的DEAE-葡聚糖與核酸帶負電的磷酸骨架相互作用形成的復(fù)合物被細胞內(nèi)吞。

主要應(yīng)用：瞬時轉(zhuǎn)染

特點：相對簡便、重復(fù)比磷酸鈣好，但對細胞有一定的毒副作用，轉(zhuǎn)染時需除去血清。聚合物濃度、核酸或蛋白質(zhì)與聚合物的比值，以及轉(zhuǎn)染的持續(xù)時間是重要的優(yōu)化參數(shù)，另外，此方法對附著細胞的轉(zhuǎn)染非常有效，也可用于某些懸浮細胞系。（詳細信息可參考文獻：Gulick T .Transfection using DEAE-dextran. Curr Protoc Cell Biol. 2003 Aug;Chapter 20:Unit 20.4. doi: 10.1002/0471143030.cb2004s19.）。

原理：DNA與濃縮的氯化鈣溶液混合，然后添加到含有磷酸鹽離子的緩沖液中，形成磷酸鈣-DNA沉淀物，磷酸鈣DNA復(fù)合物吸附細胞膜被細胞內(nèi)吞。

主要應(yīng)用：穩(wěn)定轉(zhuǎn)染，染瞬轉(zhuǎn)染

特點：不適用于原代細胞（所需的DNA濃度較高），操作簡便但重復(fù)性差，有些細胞不適用細胞建議用CSCL梯度離心，轉(zhuǎn)染時拷貝數(shù)較多。

原理：帶正電的脂質(zhì)體與核酸帶負電的磷酸基團形成復(fù)合物，然后脂質(zhì)體上剩余的電核與細胞膜上的唾液酸殘基的負電核結(jié)合；另一種解釋是通過細胞是內(nèi)吞作用而被進入細胞。(若DNA濃度過高，中和脂質(zhì)體表面電核，而降低了與細胞的結(jié)合能力)。

主要應(yīng)用：穩(wěn)定轉(zhuǎn)染，瞬時轉(zhuǎn)染，所有細胞

特點：使用方法簡單，可攜帶大片段DNA，通用于各種類型的裸露DNA或RNA，能轉(zhuǎn)染各種類型的細胞，沒有免疫原性。雖在體外基因轉(zhuǎn)染中有很高的效率，但在體內(nèi)，能被血清清除，并在肺組織內(nèi)累積，誘發(fā)強烈的抗炎反應(yīng)，導(dǎo)致高水平的毒性，這在很大程度上限制了其應(yīng)用。（生工產(chǎn)品編號E607403 LipoHigh 脂質(zhì)體高效轉(zhuǎn)染試劑）。結(jié)果如下圖所示：

pEGFP-N1 質(zhì)粒轉(zhuǎn)染 Hela 細胞。轉(zhuǎn)染前一天將 Hela 細胞接種于 24 孔板中，1E+5 個細胞/孔；轉(zhuǎn)染前將細胞培養(yǎng)基換成無血清培養(yǎng)基，按 LipoHigh (µl)：DNA (µg)= 3：1 進行轉(zhuǎn)染；轉(zhuǎn)染 4 小時后更換培養(yǎng)基為含有血清的新鮮培養(yǎng)基， 24 小時后，奧林巴斯 IX73 熒光倒置顯微鏡下觀察結(jié)果。

原理：帶正電的聚合物與核酸帶負電的磷酸基團形成帶正電的復(fù)合物后與細胞表面帶負電的蛋白多糖相互作用，并通過內(nèi)吞作用進入細胞。

應(yīng)用范圍：穩(wěn)定轉(zhuǎn)染，瞬時轉(zhuǎn)染，所有細胞

特點：除了具有陽離子脂質(zhì)體的轉(zhuǎn)染效率高，操作簡單，適用范圍廣，重復(fù)性好等特點外，還具有在體內(nèi)，轉(zhuǎn)染效率高，細胞毒性低等特點，是新一代的轉(zhuǎn)染試劑。（生工產(chǎn)品是E607401 PolyHigh 非脂質(zhì)體高效轉(zhuǎn)染試劑）。結(jié)果如下圖所示：

pEGFP-N1 質(zhì)粒轉(zhuǎn)染 HepG2 細胞。轉(zhuǎn)染前一天將 HepG2 細胞接種于 24 孔板中，1E+5 個細胞/孔；轉(zhuǎn)染更換新鮮培養(yǎng)基，按 PloyHigh (µL)：DNA (µg)= 2：1 進行轉(zhuǎn)染；轉(zhuǎn)染 4 小時后更換培養(yǎng)基，24 小時后，奧林巴斯 IX73 熒光倒置顯微鏡下觀察。

原理：通過病毒中膜糖蛋白和宿主細胞表面的受體相互作用而進入宿主細胞，之后反轉(zhuǎn)入酶啟動合成DNA并隨機整合到宿主基因組中。

主要應(yīng)用：穩(wěn)定轉(zhuǎn)染，特定宿主細胞

特點：可用于難轉(zhuǎn)染的細胞、原代細胞，體內(nèi)細胞等，但攜帶基因不能太大（<8kb），要求細胞要處于分裂期，需考慮安全因素。如下圖所示：

逆轉(zhuǎn)錄病毒表達系統(tǒng)：逆轉(zhuǎn)錄病毒將自身基因組及其攜帶的外源基因隨機、穩(wěn)定地整合入宿主細胞基因組中，可實現(xiàn)目的基因穩(wěn)定、長期的表達逆轉(zhuǎn)錄病毒表達系統(tǒng)根據(jù)不同的包裝細胞系可分為單嗜性、雙嗜性和泛嗜性，不同包裝細胞產(chǎn)生的逆轉(zhuǎn)錄病毒能夠特異性地感染某一個或某一類宿主細胞。該病毒包裝細胞系為plat E細胞系，該細胞系包含gag、pol和env基因，因此轉(zhuǎn)染單一表達質(zhì)粒就可以包裝出逆轉(zhuǎn)錄病毒，但是該病毒具有很強的針對性。（圖片來源于網(wǎng)絡(luò)）

原理：先和細胞表面的受體結(jié)合，繼而在αv整合素介導(dǎo)下被細胞內(nèi)吞

主要應(yīng)用：瞬時轉(zhuǎn)染，特定宿主細胞

特點：可用于難轉(zhuǎn)染的細胞，需考慮安全因素。如下圖所示：

腺病毒表達系統(tǒng)：一種很常用的哺乳動物病毒表達系統(tǒng)；但與慢病毒不同的是，腺病毒基因組及其攜帶的外源基因不會整合入宿主細胞的基因組中，而是游離于宿主基因組外獨立表達，因此可實現(xiàn)目的基因瞬時、高豐度的表達，同時還避免了因整合而引發(fā)的潛在的基因突變和隨機效應(yīng)，安全性和可控性高。（圖片來源于網(wǎng)絡(luò)）

原理：將DNA用顯微重金屬顆粒沉淀，再將包被好的顆粒用彈道裝置投射入細胞，DNA在胞內(nèi)逐步釋放，表達。

主要應(yīng)用：瞬時性轉(zhuǎn)染，穩(wěn)定轉(zhuǎn)染

特點：可用于人的表皮細胞，纖維原細胞，淋巴細胞系以及原代細胞。對應(yīng)的結(jié)果如下圖所示：

HEK 293細胞術(shù)后即刻激光共聚焦掃描顯微照片

用Cy3標記的siRNA包裹的直徑為1.0μm的金粒子在100psi的氦氣壓力下進行轟擊。Cy3標記siRNA上樣：2μg/mg金粒子，a）透射光圖像，b）共焦熒光圖像，c）合并圖像。白色箭頭顯示金顆粒。紅色區(qū)域代表Cy3標記siRNA的分布。（圖片來源于Masaki Uchida，Transfection by particle bombardment: Delivery of plasmid DNA into mammalian cells using gene gun .Biochimica et Biophysica Acta 1790 (2009) 754–764）。

原理：用顯微操作將DNA直接注入靶細胞核。

主要應(yīng)用：穩(wěn)定轉(zhuǎn)染，瞬時轉(zhuǎn)染

特點：轉(zhuǎn)染細胞數(shù)有限，多用于工程改造或轉(zhuǎn)基因動物的胚胎細胞。下面是報道的一篇注射法轉(zhuǎn)染的結(jié)構(gòu)圖：

eGFP和mCherry質(zhì)粒注射

（a） 以1:1的比例注射eGFP和mCherry質(zhì)?；旌衔锏腍FF細胞。（b） 用eGFP和mCherry質(zhì)粒的混合物以9:1的比例注射HFF細胞。（來源于文獻：Chow YT，Single Cell Transfection through Precise Microinjection with Quantitatively Controlled Injection Volumes.Sci Rep. 2016 Apr 12;6:24127. doi: 10.1038/srep24127.）

原理：將細胞短暫暴露于電場中，高脈沖電壓破壞細胞膜電位暫時穿孔，DNA通過膜上形成的小孔可以吸收外來的遺傳物質(zhì)，此方法也適用于傳遞蛋白質(zhì)。

主要應(yīng)用：穩(wěn)定轉(zhuǎn)染，瞬時轉(zhuǎn)染，所有細胞

特點：適用性廣，除了質(zhì)粒外，還可轉(zhuǎn)染大的基因組（>65kb）但細胞致死率高，DNA和細胞用量大， 需根據(jù)不同細胞類型優(yōu)化電穿孔實驗條件，拷貝數(shù)較少（1-20）。（詳細的信息可以參考文獻Potter, H., & Heller, R. (2018). Transfection by  electroporation.Current Protocols in Molecular Biology, 121, 9.3.1–9.3.13. doi:10.1002/cpmb.48）。

1. 準備細胞（24 孔板為例）： 

a) 貼壁細胞：轉(zhuǎn)染前18~24小時，用500 µl 不含抗生素的培養(yǎng)基接種0.5~2E+5 個細胞于24孔板中，并將細胞培養(yǎng)板置于37°C，5% CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)，轉(zhuǎn)染前細胞密度達到70~90%為理想狀態(tài)（具體密度視細胞的不同可進行適當調(diào)整）。 

b) 懸浮細胞：在準備轉(zhuǎn)染前，用500 µl不含抗生素的培養(yǎng)基接種4~8E+5個細胞即可。 

2. 準備轉(zhuǎn)染工作液： 

a) 將 0.8~1 µg質(zhì)粒DNA溶于50 µl細胞培養(yǎng)基中，輕輕混勻，室溫靜置5 min； 

b) 將 2~3 µl 的轉(zhuǎn)染試劑溶于50 µl細胞培養(yǎng)基中，輕輕混勻，室溫靜置 5 min； 

c) 將上步含有轉(zhuǎn)染試劑的培養(yǎng)基加入含有質(zhì)粒DNA的培養(yǎng)基中，輕輕混勻，室溫靜置 20 min； 

3. 將上述轉(zhuǎn)染混合液，逐滴滴入接種好的細胞中，輕輕混勻后置于37°C，5% CO2培養(yǎng)箱中進行培養(yǎng)； 

4. 4~8 小時后，更換新鮮培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)； 

5. 轉(zhuǎn)染24~48小時后，觀察或收取細胞。如果篩選穩(wěn)定細胞株，則在轉(zhuǎn)染24小時后將細胞按1:10或更高的比例接種到新鮮培養(yǎng)基中，第二天加入選擇培養(yǎng)基篩選。